水果多菌灵残留量检验方法

称取试样约5g(精确到0.1g)于50mL离心管(3.3.2)内,加10mL盐酸溶液(3.2.5),装上回流冷凝管后,加热至沸腾,回流30min。移出,冷却至室温。将离心管内的样液用砂芯漏斗抽滤,再用10mL盐酸溶液(3.2.5)分数次洗涤残渣。合并滤液,在容量瓶中用盐酸溶液(3.2.5)定容至25mL。

准确吸取2.5mL上述滤液,同时吸取与样液中多菌灵浓度相近的标准工作溶液2.5mL,分别置于15mL离心管中,加4mL二氯甲烷,在快速混匀器上混匀2min,离心(4 000r/min)3min。用尖嘴吸管吸出下层二氯甲烷,弃去。在水相中加入适量氢氧化钠溶液(10mol/L),使试液接近碱性,然后小心滴加氢氧化钠溶液(2mol/L),使试液的pH为10～11。再滴加碳酸氢钠溶液,使试液的pH调至9.5～10。用3×4 mL二氯甲烷在快速混匀器中提取2min,离心(4 000r/min)3min,用尖嘴吸管将二氯甲烷转入另一离心管中。合并三次二氯甲烷提取液,浓缩至1mL。

将上述浓缩的提取液通过注射器转入C18预处理小柱(3.3.10)。用3mL 甲醇溶液(3.2.4)洗涤离心管并过C18预处理小柱,弃去流出液。继用3mL正己烷洗涤离心管并过C18预处理小柱,弃去流出液。用2×2.5mL甲醇(3.2.3)洗涤离心管并过C18预处理小柱,收集二次洗脱液并浓缩至1mL以下。用甲醇(3.2.3)定容至1mL,供液相色谱测定。

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